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材料與方法
化學品和材料
Pilsner(EBC 3-5)、melano(EBC 60-80)和black(EBC 1300-1500)大麥麥芽從Maltbazaren(Rodovre,Denmark)獲得。絕對乙醇、2,2,6,6-四甲基哌啶-1-氧基(TEMPO)、N-叔丁基-α-苯基硝酮(PBN)、L-抗壞血酸(鈉鹽)和三水合乙酸鈉從Sigma(Steinheim,Germany)購買。過氧化氫(30%)、七水合硫酸亞鐵、氫氧化鈉顆粒和冰乙酸從Merck(Darmstadt,Germany)購買。氯化鈉從Riedl-de Haen(Seelze,Germany)獲得。所有化學品均為分析級或最高純度。水通過Milli-Q水純化系統(Millipore,Billerica,USA)純化。
糖化
使用LG-automatic MA-001全自動糖化器(Lg-automatic aps,Frederiksvark,Denmark)進行EBC congress糖化,并有所修改。五十克(±1 g)粉碎麥芽在200 mL去離子水中于46°C糖化30分鐘,然后以每分鐘1°C的速度升溫至70°C。接著,加入100 mL 70°C的去離子水。在70°C保持60分鐘(糖化休息)。此后,糖化醪冷卻至室溫,收集麥汁樣品。加入去離子水調整體積(最終體積300 mL),隨后通過開放式折疊濾紙(MN 614 Macherey-Nagel filters,Düren,Germany)過濾。樣品在過濾后直接分析或冷凍在-18°C直至分析。
通過尺寸排阻色譜分離麥汁組分
麥汁樣品通過0.2μm Minisart注射器過濾器(Sartorius Stedim,G?ttingen,Germany)過濾,并通過尺寸排阻色譜(SEC)使用?KTA FPLC系統(Pharmacia LKB Biotechnology AB,Uppsala,Sweden)進行分離,系統裝有填充Superdex?30 prep grade凝膠過濾樹脂的色譜柱(2.6×61 cm;Amersham Biosciences,Hiller?d,Denmark)。注入2 mL麥汁,用0.1 M乙酸鈉緩沖液(pH 5.0)以2.5 mL/min的流速洗脫。流出液在280 nm監測。使用自動餾分收集器(FRAC-900,Amersham Biosciences,Uppsala,Sweden)收集10 mL餾分,并根據洗脫曲線合并。此后,餾分在室溫下使用miVac模塊化離心真空濃縮器(Genevac Ltd,Suffolk,UK)濃縮20倍,并冷凍在-18°C直至分析。使用六種不同分子量標準品(牛血清白蛋白、細胞色素C、核糖核酸酶A、胰島素、(H-半胱氨酸-酪氨酸-OH)2和L-色氨酸;各約0.25 mg/mL)的洗脫時間制作校準曲線,并確定每個餾分中分離化合物的尺寸范圍。
顏色測定
根據Analytica EBC,使用Varian Cary 3紫外-可見分光光度計(EUA)進行比色測定:
C=25·f·A???
其中C為EBC單位顏色,f為稀釋因子,A???為430 nm處的吸光度,25為乘法因子。通過SEC分離的餾分的顏色使用TECAN GENios Plus微孔板讀數器(Tecan Group Ltd,M?nnedorf,Switzerland)在96孔板中測量。
通過靜態光散射結合尺寸排阻色譜進行尺寸測定
設置包括LC10AD HPLC泵(Shimadzu,Kyoto,Japan),將樣品依次通過Superose 6和Superdex 200色譜柱(GE Healthcare),然后通過Dawn EOS多角度光散射儀器(Wyatt Technology,Santa Barbara,CA,USA)帶有K5流動池,最后通過RID10A差示折射計(Shimadzu,Kyoto,Japan)。光散射儀器通過運行BSA(100μL,5 mg/mL)使用pH 7.0磷酸鹽緩沖液含60 mM NaCl作為洗脫液,通過軟件Astra 4.73.04校準。BSA單體峰指定分子質量為66,400 g/mol和折射率增量dn/dc=0.185 mL/g。
用于麥汁樣品測量的洗脫液為0.1 M乙酸鈉緩沖液,pH 5.0,含60 mM NaCl。樣品通過0.22μm Millex GV注射器過濾器(Millipore)過濾,并在洗脫液中稀釋如下:pilsner麥汁1:2,melano麥汁不稀釋,黑麥汁1:5。將100μL樣品加載到色譜柱上,以0.5 mL/min洗脫。使用Astra軟件計算洗脫曲線每點對應的分子質量(和回轉半徑),假設洗脫物種的折射率增量為dn/dc=0.145,典型于多糖。
基于Fenton反應的自旋加合物電子自旋共振檢測
自旋加合物的電子自旋共振(ESR)檢測根據R?djer等人描述的assay進行,并有所修改。將PBN(3.7 mL,31 mM)在水性乙醇溶液(5.8%,v/v)中與20μL FeSO?(22 mM)和200μL待分析樣品混合。作為參考,加入200μL Milli-Q水代替樣品。通過加入80μL H?O?(24 mM)啟動反應。H?O?的濃度通過分光光度法確認(ε???=39.4 M?1cm?1)。混合物輕輕混合,在室溫下孵育2分鐘,并轉移至50μL ESR石英毛細管微量移液器(Blau-brand IntraMARK,Brand GmbH,Wertheim,Germany)。加載的微量移液器在一端密封并放置在ESR腔中。ESR光譜在JEOL JES-FR30 ESR光譜儀(JEOL Ltd,Tokyo,Japan)上記錄,使用以下儀器設置:4分鐘掃描時間、4 mW微波功率和0.1 mT調制幅度。光譜的幅度測量為中心雙峰的高度,相對于附著在ESR腔上的內部Mn2?標準品的ESR信號高度。每天記錄水性TEMPO溶液的ESR光譜以消除日間變異。
溶解氧測量
氧氣含量在2 mL水性乙醇溶液(5.8%,v/v)與20μL FeSO?(11 mM)和100μL待分析樣品的混合物中測定,按此順序加入。作為參考,加入100μL Milli-Q水代替樣品?;旌衔镌? mL微呼吸室(Unisense)中輕輕混合,浸入25°C水浴中,并通過腔蓋中的薄毛細管使用Clark型電流氧微傳感器連接PA2000皮安計儀器(Unisense,Aarhus,Denmark)在90分鐘內測量氧氣含量。裝置校準通過使用空氣O?飽和的水性乙醇溶液(1 M)作為100%O?含量和0.1 M L-抗壞血酸溶液在0.1 M NaOH中作為0%溶解氧進行,使用以下儀器設置:2000 pA范圍和-0.80 V極化。
統計分析
結果表示為至少三次獨立實驗的平均值±標準差(SD)。使用GraphPad Prism軟件v.5.01(GraphPad Software,La Jolla,California,USA)進行單因素ANOVA和Tukey檢驗檢測均值差異。在一些統計分析中考慮了的方差齊性要求。p值小于0.05(p<0.05)被認為表示統計學顯著差異。